Gelatin Affinity Chromatography Media (4FF) Gelatin Beads 4FF

GoodsCode: BDTL0076
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Specs Price Futures Quantity
  • 5ml
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    25ml
    170.00
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    100ml
    570.00
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Product Informations

  • Product No. BDTL0076
  • Synonyms Gelatin Affinity Chromatography Media (4FF) Gelatin Beads 4FF
  • Product Name Gelatin Affinity Chromatography Media (4FF) Gelatin Beads 4FF
  • Category 529
  • Performance 5-8mg 明胶,1mg 纤维结合素/ml
  • Particle Size 45-165
  • Instruction Manual /files/uploads/instructions/2021/202109/BDTL0076_Gelatin亲和层析介质(4FF) Gelatin Beads 4FF_说明书.pdf
  • Application One-step purification or removal of fiber-binding proteins

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Product Details

 1.产品介绍
Gelatin Beads 4FF 是用于纯化或去除纤连蛋白的一类介质。纤连蛋白是一种大分子糖蛋白,广泛存在于动物组织、组织液和血浆中。Gelatin Beads 4FF 采用高交联的 4%琼脂糖介质,可耐受较高的流速及化学稳定性,适合大规模纯化。具体性能见表 1。
表1. Gelatin亲和层析介质(4FF)产品性能
性能 指标
基质 高度交联的4%琼脂糖微球
配体 明胶
配体密度 >4mg /ml 介质
载量(/ml 介质) 1mg 人血浆纤连蛋白
粒径 (μm) 45-165
最大流速 0.3 MPa, 3 bar
pH 稳定范围 3-10
储存缓冲液 含20% 乙醇的1×PBS
储存温度 2-8℃
2. 纯化流程
2.1 Buffer的准备
所用水和Buffer在使用之前建议用0.22μm或0.45 μm滤膜过滤。
-平衡/洗杂Buffer: 50mM Tris-HCl, 0.15M NaCl, 1mM EDTA, pH7.4
-洗脱Buffer: 50mM sodium acetate , 1.0M NaBr 或 KBr, pH5.0
-洗脱Buffer还可选择:平衡Buffer中加入 8M 尿素
-平衡/洗杂Buffer可选择生理条件下的 pH和离子浓度,磷酸盐或Tris-HCl缓冲液都可以。
2.2 样品准备
上柱之前要确保样品溶液有合适的离子强度和 pH 值,可以用平衡/洗杂液对血清样品、腹水或细胞培养液稀释,或者样品用平衡/洗杂液透析。
样品在上样前建议离心或用 0.22μm 或 0.45μm 滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。
注:纤连蛋白可以吸附到玻璃上,所用容器等可选择硅化玻璃,减少样品损失。
2.3 Gelatin Beads 4FF 装填
Gelatin Beads 4FF 被广泛应用于工业纯化,因此,涉及到各种中压色谱层析柱的填装, 下面介绍使用 Gelatin Beads 4FF 填装层析柱的方法。
层析柱的装填(使用储液器装填)
-用去离子水冲洗层析柱底筛板与接头,确保柱底筛板上无气泡,关闭柱底出口,并在柱底部留出 1-2cm的去离子水。
-将树脂悬浮起来,小心的将浆液连续地倒入层析柱中。用玻璃棒沿着柱壁倒入浆液可减少气泡的产生。
-如果使用储液器,应立即在层析柱和储液器中加满水,将进样分配器放置于浆液表面,连接至泵上,避免在分配器或进样管中产生气泡。
-打开层析柱底部出口,开启泵,使其在设定的流速下进行。最初应让缓冲液缓慢流过层析柱,然后缓慢增加至最终流速,这样可避免液压对所形成柱床的冲击,也可以避免柱床形成的不均匀。如果达不到推荐的压力或流速,可以用你所使用泵的最大流速,这样也可以得到一个很好的装填效果。(注意:在随后的色谱程序中,不要超过最大装柱流速的 75%) 当柱床高度稳定后,在最后的装柱流速下至少再上3倍柱床体积的去离子水。标上柱床高度。
-关闭泵,关闭层析柱出口。
-如果使用储液器,去除储液器,将分配器置于层析柱中。
-将分配器推向柱子至标记的柱床高度处。允许装柱液进入分配器,锁紧分配器接头。
-将装填好的层析柱连接至泵或色谱系统中,开始平衡。如果需要可以重新调整分配器。
2.4 样品纯化
Gelatin Beads 4FF 装填好后,可以用各种常规的中低压色谱系统
-将泵管道中注满去离子水。去掉上塞子,将层析柱连接至色谱系统中,打开下出口,将预装柱接到色谱系统中,并旋紧。
-用 3-5倍柱体积的去离子水冲洗出储存缓冲液。
-使用至少5倍柱床体积的平衡液平衡色谱柱。
-利用泵或样品环上样。注:样品的粘度增加使得即使上样体积很少,也会导致层析柱很大的反压。上样量不要超过柱子的结合能力。大量的样品体积也可能造成很大的反压,使得进样器更难使用。
-用洗杂液冲洗柱子,直到紫外吸收达到一个稳定的基线(一般至少10-15个柱体积)。
-使用 5-10 倍柱体积的洗脱液洗脱,收集洗脱液,即目的蛋白组分。
2.5 SDS-PAGE检测
将使用纯化产品得到的样品(包括流出组分、洗杂组分和洗脱组分)以及原始样品使用SDS-PAGE检测纯化效果。
3. 层析介质再生和清洗
本产品可以选择使用 2-3 倍柱体积的 0.1M Tris-HCl, 0.5M NaCl,pH8.5 和 0.1M 醋酸钠,0.5M NaCl, pH4.5 清洗,重复3次,在用3-5倍柱体积的结合液平衡。
去除一些沉淀或变性物质,建议使用下面的方法
用 2-3 倍柱体积的 0.1% Triton™ X-100 37 度清洗,然后立即用 5 倍柱体积的结合液平衡。

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